Kurzüberblick
Gefäßkatheter-assoziierte Infektionen gehen von einem liegenden Gefäßkatheter aus: periphere Verweilkanüle, arterielle Kanüle, zentraler Venenkatheter (ZVK), Shaldon-Katheter, getunnelter Katheter (Hickman, Broviac) oder Port. Sie reichen von der Lokalinfektion an der Einstichstelle bis zur Blutstrominfektion mit Sepsis.
Die katheterassoziierte Blutstrominfektion (CRBSI) ist eine klinische Diagnose: Der Katheter muss als Quelle mikrobiologisch belegt sein. Davon zu trennen ist die ZVK-assoziierte Blutstrominfektion (CLABSI) der Hygiene-Surveillance. Sie verlangt diesen Beleg nicht [1]. Auf deutschen Intensivstationen treten 1,2 ZVK-assoziierte Blutstrominfektionen pro 1000 ZVK-Tage auf [2]. Sie erhöhen das Sterberisiko (OR 1,5 in gematchten Studien) [3].
Drei Grundregeln: Vor jeder Therapie gepaarte Blutkulturen aus Katheter und Vene. Den Katheter in der Regel entfernen. Bei S. aureus, Candida und P. aeruginosa immer. Die Therapiedauer zählt ab der ersten negativen Blutkultur [1][4].
Jede Katheterinfektion sollte eine infektiologische Rücksprache mit dem ABS-Team bzw. dem infektiologischen Konsildienst auslösen.
Grundlage sind die IDSA-Leitlinie 2009 und die AGIHO-Leitlinie 2020 [1][4]. Eine aktuelle internationale Leitlinie gibt es nicht. Die IDSA hat eine Neufassung angekündigt. Das Kapitel gilt für Erwachsene. Bei Penicillinallergie zuerst das Risiko mit dem PEN-FAST-Rechner einschätzen.
Siehe auch Sepsis und septischer Schock.
Red Flags
Jede Red Flag ist ein Grund, den Katheter sofort zu entfernen und nach Komplikationen zu suchen [1][4].
- Sepsis oder septischer Schock
- Tunnel- oder Portkammerinfektion, Eiter an der Einstichstelle
- Blutkultur 72 h nach Beginn wirksamer Therapie noch positiv: an eitrige Thrombophlebitis, Endokarditis und metastatische Herde denken
- S. aureus, Candida oder P. aeruginosa in der Blutkultur
- Klappenprothese, Schrittmacher oder ICD, neues Herzgeräusch, Embolien → Echokardiographie, Endokarditis
- Schwellung oder Schmerz der Extremität bzw. am Hals: Thrombose an der Katheterspitze
Einteilung
Lokalinfektion
- Exit-site-Infektion: Rötung, Verhärtung oder Druckschmerz bis 2 cm um die Austrittsstelle, ggf. Eiter
- Tunnelinfektion: Rötung, Verhärtung oder Druckschmerz mehr als 2 cm entlang des subkutanen Tunnels
- Portkammerinfektion: infizierte Flüssigkeit in der Porttasche, oft mit Rötung, Spontanentleerung oder Hautnekrose [1]
- Jede Form mit oder ohne Blutstrominfektion.
Katheterassoziierte Blutstrominfektion (CRBSI)
- unkompliziert: Blutkultur innerhalb von 72 h unter wirksamer Therapie negativ, Entfieberung, keine der Komplikationen unten
- kompliziert: eitrige Thrombophlebitis, Endokarditis, Osteomyelitis oder andere metastatische Herde. Blutkultur nach 72 h noch positiv [1]
- Entfieberung innerhalb von 48 h nach Katheterentfernung ohne anderen Fokus stützt die Diagnose [4].
Kurzzeitkatheter liegen weniger als 14 Tage (periphere Verweilkanüle, arterielle Kanüle, nicht getunnelter ZVK, Shaldon-Katheter). Langzeitkatheter sind getunnelt oder implantiert (Hickman, Broviac, Port) [1].
Diagnostik
Blutkulturen
- gepaart vor der ersten Antibiotikagabe: ein Set aus dem Katheter und ein Set aus einer peripheren Vene, gleichzeitig, mit gleichem Volumen, nach Entnahmeort beschriftet [1]
- 20–30 ml Blut pro Set [5]
- ohne periphere Punktion: mindestens 2 Sets aus verschiedenen Lumina [1]
- Desinfektion von Haut und Katheteransatz mit alkoholischem Antiseptikum [1]
Gesicherte CRBSI
Derselbe Erreger in der peripheren Blutkultur und eines der folgenden Kriterien [1][4]:
- Differential time to positivity (DTP): Die Blutkultur aus dem Katheter wird mindestens 2 h früher positiv als die periphere. Sensitivität 81 %, Spezifität 92 % [6].
- quantitative Blutkultur: mindestens 3-fach höhere Keimzahl aus dem Katheter
- Katheterspitze: mehr als 15 KBE (Ausrolltechnik) bzw. mehr als 102 KBE (Ultraschall) desselben Erregers [1]

Die DTP ist bei S. aureus und Candida nicht verwertbar und schließt eine Katheterinfektion nicht aus [6][4]. Unter laufender Antibiotikatherapie ist sie unzuverlässig [1].
Weitere Hinweise
- Katheterspitze nur bei Verdacht auf Katheterinfektion einschicken, nicht routinemäßig bei jeder Entfernung [1][5]. Etwa 5 cm der Spitze steril abschneiden. Bei Port: Portkammerinhalt und Spitze [1].
- KNS in nur einer Blutkultur sind oft eine Kontamination: vor Therapiebeginn gepaarte Blutkulturen wiederholen [1].
- Corynebacterium, Bacillus und Mikrokokken nur werten, wenn mindestens 2 Blutkulturen aus verschiedenen Entnahmestellen positiv sind [1].
- Lokale Zeichen (Rötung, Eiter) sind spezifisch, aber selten. Fieber ist häufig, aber unspezifisch [1].
- Exsudat an der Austrittsstelle: Abstrich für Kultur und Gramfärbung [1].
Katheter entfernen oder erhalten
Katheter immer entfernen
- Kurzzeitkatheter bei jeder CRBSI [1]
- Langzeitkatheter und Port bei
- Sepsis oder septischem Schock
- Tunnel- oder Portkammerinfektion
- eitriger Thrombophlebitis, Endokarditis, metastatischen Herden
- Blutkultur 72 h nach Beginn wirksamer Therapie noch positiv
- S. aureus, P. aeruginosa, Candida, Mykobakterien, Bacillus, Mikrokokken, Cutibacterium [1][4]
Port oder getunnelten Katheter erhalten
- nur bei KNS (nicht S. lugdunensis) und schwer ersetzbarem Port oder getunneltem Katheter. Bei Enterokokken und Enterobacterales nur nach infektiologischer Rücksprache. Bei allen anderen Erregern entfernen [7][8][9]
- Voraussetzungen (alle)
- stabil, keine Sepsis
- keine Tunnel-, Portkammer- oder Exit-site-Infektion
- kein Hinweis auf Endokarditis, eitrige Thrombophlebitis oder Absiedlungen. Kein intravaskuläres Fremdmaterial
- keine Neutropenie oder schwere Immunsuppression. Kein Rückfall nach früherem Erhalt [9]
- Fortsetzen nur, wenn die Patient:in entfiebert, die Entzündungswerte deutlich fallen und die Kontrollblutkulturen (peripher und aus dem Katheter) 72 h nach Therapiebeginn negativ sind. Sonst entfernen [1][9]
- systemische Therapie nach Antibiogramm 10–14 Tage ab der ersten negativen Blutkultur, über den Katheter gegeben [1]
- Blutkulturen aus allen Lumina 48–72 h nach Therapieende. Bei erneutem Nachweis entfernen [9]

Die Leitlinien sehen einen Erhalt nur zusammen mit einer Antibiotika-Lock-Therapie vor [1][9]. Der Erhalt ohne Lock ist eine Hausentscheidung mit höherem Rückfallrisiko. Ohne Lock gelang er bei Heimparenteraler Ernährung in 60 % (Rückfall 15 %). Bei KNS brachte die Lock-Therapie keinen sicheren Vorteil [7].
Neuanlage
- Kein Wechsel über Führungsdraht. Den Katheter entfernen (Port chirurgisch) und an einem anderen Gefäß neu punktieren [4].
- Erst neu anlegen, wenn die Kontrollblutkulturen negativ sind und der Zustand stabil ist. Bei S. aureus und Candida immer erst nach negativer Kontrolle [1].
- Notwendigkeit jedes Katheters täglich prüfen.
Therapie
Grundsätze
- Katheter entfernen ist die wichtigste Maßnahme (Abschnitt oben).
- Kalkuliert Vancomycin: KNS sind die häufigsten Erreger und überwiegend oxacillinresistent (S. epidermidis aus Blutkulturen 61 %) [2][10].
- Kombination nur bei einem zweiten Fokus, dann beide gezielt behandeln (Karte kalkulierte Therapie).
- Nach Erregernachweis gezielt nach Antibiogramm. Dauer nach Erreger, ab der ersten negativen Blutkultur [1].
- Keine Antibiotika-Lock-Therapie.
Therapie
KNS, Katheter entfernt
ohne Fremdmaterial und Neutropenie nach Rücksprache auch ohne Antibiotika (Karte KNS)
KNS, Port erhalten
nur bei sehr unkompliziertem Verlauf (Abschnitt Katheter entfernen oder erhalten)
Gramnegative
Katheter entfernt, rasche Besserung. 10–14 Tage bei Neutropenie oder erhaltenem Katheter
Enterokokken
7–14 Tage nach Verlauf
Candida
ab dem ersten von drei negativen Tagen. Umstellung auf Fluconazol frühestens nach 5 Tagen (Karte Candida)
Eitrige Thrombophlebitis
Endokarditis, Osteomyelitis: nach den Kapiteln Endokarditis, Hämatogene Osteomyelitis
Die Dauer zählt ab dem Tag der ersten negativen Blutkultur. Wird der Katheter später entfernt, zählt sie ab der Entfernung.
Kalkulierte Therapie
- 1. Wahl
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – bis zum Erregernachweis
- Talspiegel 15–20 mg/l (Expertenempfehlung). AUC-Steuerung, wo verfügbar [11]
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – bis zum Erregernachweis
- zusätzlich bei Sepsis, Neutropenie, Femoralkatheter oder bekannter Besiedlung mit Gramnegativen
- Piperacillin/Tazobactam – 4x 4,5 g iv – bis zum Erregernachweis
- zusätzlich bei Sepsis und Candida-Risiko (parenterale Ernährung, Femoralkatheter, hämatologische Erkrankung, Transplantation, lange Breitspektrumtherapie, Candida an mehreren Stellen) [1]
- Caspofungin – 70 mg iv an Tag 1, dann 1x 50 mg iv, ab 80 kg KG 1x 70 mg iv – bis zum Erregernachweis
- Körpergewicht erfassen: Die meisten Patient:innen wiegen über 80 kg, dann bleibt es bei 70 mg täglich. Das Gewicht wird im Alltag oft nicht beachtet [12].
- Caspofungin – 70 mg iv an Tag 1, dann 1x 50 mg iv, ab 80 kg KG 1x 70 mg iv – bis zum Erregernachweis
- Hinweise
- Linezolid nicht kalkuliert einsetzen: Im Vergleich mit Vancomycin starben mehr Patient:innen, vor allem bei gramnegativen Erregern oder ohne Erregernachweis (21,5 % vs. 16,0 %) [13][1].
- Stabile Patient:innen mit entferntem Katheter: Ergebnis der Blutkulturen abwarten ist möglich.
- Zweiter Fokus: Piperacillin/Tazobactam erfasst KNS nicht, Vancomycin erfasst keine Gramnegativen. Liegt neben der Katheterinfektion ein zweiter Fokus vor, beide gezielt behandeln, z. B. S. aureus und gesicherter Harnwegsinfekt: Flucloxacillin plus Pivmecillinam (S.-aureus-Bakteriämie, Harnwegsinfektionen).

Penicillinallergie: zuerst die Diagnose klären
Mit dem PEN-FAST-Rechner das Risiko einschätzen. Entscheidend ist die Art der Reaktion: Sofortreaktion (Typ I, z. B. Anaphylaxie, Urtikaria, Bronchospasmus) oder Spätreaktion (Typ IV, z. B. Exanthem nach Tagen). Ein Exanthem wird oft als Allergie geführt und nie hinterfragt. Es schließt Cefazolin und meist auch andere Betalaktame nicht aus [14].
Ohne zweiten Fokus ist die Allergie für die kalkulierte Therapie unerheblich: Vancomycin. Bei gesicherter schwerer Sofortreaktion und gramnegativem Zweitfokus den Partner nach Erreger und Antibiogramm wählen, z. B. Ciprofloxacin bei E. coli. Ciprofloxacin wirkt nicht gegen KNS.
Koagulase-negative Staphylokokken (KNS)
- oxacillinsensibel: 1. Wahl
- Cefazolin – 3x 2 g iv – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- oxacillinsensibel: Alternative
- Flucloxacillin – 4x 3 g iv auf Normalstation (off-label nach allgemeinem Expertenkonsens). Auf ITS/IMC 6x 2 g iv – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- oxacillinresistent: 1. Wahl
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- Talspiegel 10–15 mg/l (unkomplizierte Infektion). AUC-Steuerung, wo verfügbar [11]
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- oxacillinresistent: Alternative
- Linezolid – 2x 600 mg iv oder po – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- höchstens 28 Tage. Blutbild wöchentlich
- Daptomycin – 1x 10 mg/kg KG iv – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- nicht bei möglicher Pneumonie: in der Lunge unwirksam [15]
- CK wöchentlich. Statine pausieren [15]
- Linezolid – 2x 600 mg iv oder po – 5–7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- Hinweise
- 5–7 Tage nach Entfernung. 10–14 Tage, wenn der Port erhalten wird [1].
- Nach Entfernung ohne Antibiotika möglich, wenn kein intravaskuläres oder orthopädisches Fremdmaterial liegt, keine Neutropenie besteht und die Kontrollblutkultur nach Entfernung negativ ist. Nur nach infektiologischer Rücksprache [1][16].
- Wird der Katheter erhalten, kommt es 6,6-mal häufiger zum Rückfall [17].
- S. lugdunensis wie S. aureus behandeln: Endokarditis bei 15–25 % [1][18].
Staphylococcus aureus
- Vorgehen
- Katheter immer und sofort entfernen [1].
- Substanz, Kontrollblutkulturen, Echokardiographie und Dauer nach Kapitel S.-aureus-Bakteriämie: 14 Tage ab erster negativer Blutkultur ohne tiefen Herd, 4–6 Wochen mit tiefem Herd.
- Neuen Katheter erst nach negativer Kontrollblutkultur [1].
Enterokokken
- ampicillinsensibel (meist E. faecalis)
- Ampicillin – 4x 2 g iv – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- ampicillinresistent (meist E. faecium)
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- Talspiegel 15–20 mg/l (Expertenempfehlung). AUC-Steuerung, wo verfügbar [11]
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- vancomycinresistent (VRE), gleichrangig
- Linezolid – 2x 600 mg iv oder po – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- höchstens 28 Tage. Blutbild wöchentlich
- Daptomycin – 1x 10–12 mg/kg KG iv – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- nicht bei möglicher Pneumonie: in der Lunge unwirksam [15]
- CK wöchentlich. Statine pausieren [15]
- Linezolid – 2x 600 mg iv oder po – 7–14 Tage ab erster negativer Blutkultur
- Hinweise
- Kurzzeitkatheter entfernen. Dauer 7–14 Tage nach Verlauf [1].
- Daptomycin bei VRE hochdosiert (off-label). In Beobachtungsstudien Linezolid gleichwertig [19].
- E. faecalis: Endokarditis mit dem DENOVA-Score einschätzen. Unter 3 Punkten ist ein TEE meist verzichtbar [20].
- Ampicillin/Sulbactam nur bei Mischinfektion.
Gramnegative Erreger
- Enterobacterales
- gezielt nach Antibiogramm, z. B. Ceftriaxon – 1x 2 g iv – 7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- P. aeruginosa
- Piperacillin/Tazobactam – 4x 4,5 g iv – 7 Tage ab erster negativer Blutkultur
- oder Cefepim – 3x 2 g iv – nach Antibiogramm
- Hinweise
- Katheter entfernen: Kurzzeitkatheter immer, Langzeitkatheter bei P. aeruginosa immer, sonst innerhalb von 48–72 h [1][4].
- 7 Tage reichen bei entferntem Katheter und rascher Besserung (BALANCE: 3608 Patient:innen, 6 % mit Katheter als Quelle) [21][22]. 10–14 Tage bei Neutropenie, schwerer Immunsuppression oder erhaltenem Katheter.
Candida
- 1. Wahl
- Caspofungin – 70 mg iv an Tag 1, dann 1x 50 mg iv, ab 80 kg KG 1x 70 mg iv – 14 Tage ab dem ersten Tag dauerhaft negativer Blutkulturen (drei Tage in Folge)
- Körpergewicht erfassen: Die meisten Patient:innen wiegen über 80 kg, dann bleibt es bei 70 mg täglich. Das Gewicht wird im Alltag oft nicht beachtet [12].
- Caspofungin – 70 mg iv an Tag 1, dann 1x 50 mg iv, ab 80 kg KG 1x 70 mg iv – 14 Tage ab dem ersten Tag dauerhaft negativer Blutkulturen (drei Tage in Folge)
- Umstellung
- Fluconazol – 1x 400 mg po, an Tag 1 800 mg – nach Stabilisierung, bei negativer Kontrollblutkultur und fluconazolsensiblem Isolat [4][23]
- Hinweise
- Immer infektiologisches Konsil: Candidämie muss länger und gezielt behandelt werden.
- Katheter immer entfernen. Die Entfernung senkt die Letalität (OR 0,50) [1][24].
- Auch behandeln, wenn die Blutkultur nach Entfernung von allein negativ wird [1].
- Kontrollblutkulturen täglich, bis drei Tage in Folge negativ. Die 14 Tage zählen ab dem ersten dieser Tage [25].
- Augenhintergrund bei Augensymptomen, persistierender Candidämie, Immunsuppression und nicht befragbaren Patient:innen [25]. Die Untersuchung aktiv anfordern, sie wird ohne Augenheilkunde vor Ort oft vergessen. Bei Neutropenie nach Erholung der Granulozyten [23].
- Echokardiographie bei anhaltend positiver Blutkultur, Klappenerkrankung oder kardialem Device [1][25].
- Ausführlich im Kapitel Candidämie und invasive Candidose, nach der Leitlinie ECMM/ISHAM/ASM 2025 [25].
Seltene Erreger
- Bacillus, Corynebacterium, Mikrokokken, Cutibacterium
- nur werten, wenn mindestens 2 Blutkulturen positiv sind [1]
- Katheter entfernen. Bei Bacillus traten Rückfälle nur bei erhaltenem Katheter auf [1][26]
- Vancomycin – nach Dosierungsschema (Start 2x 15 mg/kg KG iv) – 7–14 Tage nach Entfernung
- Talspiegel 10–15 mg/l (unkomplizierte Infektion). AUC-Steuerung, wo verfügbar [11]

Neutropenie und hämatologisch-onkologische Erkrankungen
Die AGIHO-Leitlinie weicht in einigen Punkten ab [4]: Bei febriler Neutropenie wird kalkuliert kein Glykopeptid empfohlen. Kalkuliert Piperacillin/Tazobactam oder ein Carbapenem. Gramnegative: Katheter innerhalb von 48–72 h entfernen. Bei anhaltender Neutropenie bis 5–7 Tage nach Entfieberung behandeln. Kein Wechsel über Führungsdraht.
Hinweise zu den Substanzen
- Vancomycin: Dosis nach Körpergewicht und Spiegel. Nierenfunktion überwachen [11].
- Daptomycin: in der Lunge unwirksam. Ist eine Pneumonie möglich, ist Linezolid die Alternative zu Vancomycin [15].
- Linezolid: höchstens 28 Tage. Thrombozytopenie, Neuropathie, Serotoninsyndrom mit serotonergen Arzneimitteln.
- Niereninsuffizienz: Dosierung bei Niereninsuffizienz
Komplikationen
- Blutkultur 72 h nach Beginn wirksamer Therapie noch positiv: Katheter entfernen, Sonographie oder CT auf Thrombus, Echokardiographie (TEE) [1].
- Eitrige Thrombophlebitis: Nachweis durch positive Blutkultur und Thrombus in der Bildgebung. Mindestens 3–4 Wochen behandeln. Operative Venenresektion nur bei oberflächlicher eitriger Vene oder Versagen [1].
- Endokarditis: 4–6 Wochen, nach Kapitel Endokarditis.
- Osteomyelitis: 6–8 Wochen, nach Kapitel Hämatogene Osteomyelitis bzw. Spondylodiszitis [1].
Orale Folgetherapie
Für Katheterinfektionen gibt es keine eigene Studie. Eine Umstellung ist möglich, wenn der Katheter entfernt ist, die Kontrollblutkultur negativ ist, die Patient:in entfiebert und die Einnahme gesichert ist.
- Gramnegative: gut bioverfügbare Substanz nach Antibiogramm, z. B. Ciprofloxacin oder Cotrimoxazol. In einer großen Kohorte war die Umstellung gleichwertig. Bei 18 % war ein ZVK die Quelle [27].
- KNS: Nach Entfernung reichen meist 5–7 Tage. Linezolid oral nach Antibiogramm.
- S. aureus: nur nach Kapitel S.-aureus-Bakteriämie.
- Candida: Fluconazol nach Karte Candida.
Prävention
Maßgeblich ist die KRINKO-Empfehlung zur Prävention von Infektionen durch Gefäßkatheter [28]. Wichtigste Punkte: Indikation täglich prüfen, nicht benötigte Katheter entfernen, Maßnahmenbündel bei Anlage und Pflege. Der Insertionsort beeinflusst das Risiko: Infektionen und Thrombosen waren bei der V. subclavia seltener als bei der V. jugularis oder femoralis [29].
Epidemiologie
ITS-KISS 2021–2025: 1,18 ZVK-assoziierte Blutstrominfektionen pro 1000 ZVK-Tage (Median 0,82), auf internistischen Intensivstationen 1,59 [2].
| Kathetertyp | Blutstrominfektionen pro 1000 Kathetertage |
|---|---|
| periphere Verweilkanüle | 0,5 |
| arterielle Kanüle | 1,7 |
| ZVK, nicht getunnelt | 2,7 |
| PICC (stationär) | 2,1 |
| getunnelter Katheter | 1,6 |
| Port | 0,1 |
In Deutschland sind 4,2 % der S.-aureus-Isolate aus Blutkulturen MRSA (2024) [31]. Bei S. epidermidis aus Blutkulturen sind 61 % oxacillinresistent (ARS-Daten Sachsen 2024) [10].
Erreger und Pathophysiologie
| Erreger | pro 100 Infektionen |
|---|---|
| S. epidermidis | 25,3 |
| andere KNS | etwa 7 |
| E. faecium | 19,1 |
| E. faecalis | 5,3 |
| S. aureus | 9,4 |
| Candida spp. | 9,1 |
| Klebsiella spp. | 6,9 |
| E. coli | 5,2 |
Weitere Erreger: P. aeruginosa, Enterobacter, Serratia, seltener Corynebacterium, Bacillus und Cutibacterium (früher Propionibacterium) [32].
Pathophysiologie
Bei Kurzzeitkathetern wandern die Erreger meist von der Haut an der Einstichstelle außen am Katheter entlang [33]. Bei Langzeitkathetern gelangen sie meist über den Ansatz in das Lumen [34]. Seltener ist eine kontaminierte Infusionslösung die Quelle.
Auf dem Kunststoff entsteht innerhalb weniger Tage ein Biofilm. An der Anheftung beteiligt sind bei S. epidermidis vor allem das Autolysin AtlE und Oberflächenproteine, die an Fibrinogen und Fibronektin auf der Katheteroberfläche binden. Bei S. aureus Clumping-Faktoren und fibronektinbindende Proteine. Die Zellhaufen werden durch das Polysaccharid PIA (ica-Operon) und Proteine wie Aap zusammengehalten [35][36].
Im Biofilm teilen sich die Bakterien langsamer und sind vor Antibiotika und Immunabwehr geschützt. Das Quorum-sensing-System Agr steuert bei Staphylokokken vor allem die Ablösung von Biofilmteilen [37]. Abgelöste Teile führen zur Bakteriämie und zur Absiedlung in andere Gewebe oder Implantate.
Quellen & Hinweise
- [1] Mermel LA, Allon M, Bouza E, et al. Clinical practice guidelines for the diagnosis and management of intravascular catheter-related infection: 2009 Update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2009;49(1):1–45. doi:10.1086/599376 (von der IDSA archiviert, Neufassung angekündigt).
- [2] Nationales Referenzzentrum für Surveillance von nosokomialen Infektionen. ITS-KISS, Referenzdaten Januar 2021 bis Dezember 2025, alle Stationsarten. Erstellt 11.05.2026. nrz-hygiene.de
- [3] Ziegler MJ, Pellegrini DC, Safdar N. Attributable mortality of central line associated bloodstream infection: systematic review and meta-analysis. Infection. 2015;43(1):29–36. doi:10.1007/s15010-014-0689-y
- [4] Böll B, Schalk E, Buchheidt D, et al. Central venous catheter-related infections in hematology and oncology: 2020 updated guidelines on diagnosis, management, and prevention by the Infectious Diseases Working Party (AGIHO) of the German Society of Hematology and Medical Oncology (DGHO). Ann Hematol. 2021;100(1):239–259. doi:10.1007/s00277-020-04286-x
- [5] Miller JM, Binnicker MJ, Campbell S, et al. Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases: 2024 Update by the IDSA and the ASM. Clin Infect Dis. 2024. doi:10.1093/cid/ciae104
- [6] Dhaliwal M, Daneman N. Utility of Differential Time to Positivity in Diagnosing Central Line-Associated Bloodstream Infections: A Systematic Review and Meta-Analysis. Clin Infect Dis. 2023;77(3):428–437. doi:10.1093/cid/ciad225
- [7] Gompelman M, Paus C, Bond A, et al. Comparing success rates in central venous catheter salvage for catheter-related bloodstream infections in adult patients on home parenteral nutrition: a systematic review and meta-analysis. Am J Clin Nutr. 2021;114(3):1173–1188. doi:10.1093/ajcn/nqab164
- [8] Sandoe JA, Witherden IR, Au-Yeung HK, et al. Enterococcal intravascular catheter-related bloodstream infection: management and outcome of 61 consecutive cases. J Antimicrob Chemother. 2002;50(4):577–582. doi:10.1093/jac/dkf182
- [9] Chaves F, Garnacho-Montero J, Del Pozo JL, et al. Diagnosis and treatment of catheter-related bloodstream infection: Clinical guidelines of the Spanish Society of Infectious Diseases and Clinical Microbiology (SEIMC) and the Spanish Society of Intensive and Critical Care Medicine and Coronary Units (SEMICYUC). Med Intensiva (Engl Ed). 2018;42(1):5–36. doi:10.1016/j.medin.2017.09.012
- [10] Landesuntersuchungsanstalt Sachsen. ARS-Auswertung Staphylococcus epidermidis 2024 (Resistenztabellen). Erstellt 17.12.2025. lua.sachsen.de
- [11] Rybak MJ, Le J, Lodise TP, et al. Therapeutic monitoring of vancomycin for serious methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections: a revised consensus guideline (ASHP, IDSA, PIDS, SIDP). Am J Health Syst Pharm. 2020;77(11):835–864. doi:10.1093/ajhp/zxaa036
- [12] Fachinformation bzw. EPAR Cancidas (Caspofungin), Abschnitt 4.2 Dosierung.
- [13] Wilcox MH, Tack KJ, Bouza E, et al. Complicated skin and skin-structure infections and catheter-related bloodstream infections: noninferiority of linezolid in a phase 3 study. Clin Infect Dis. 2009;48(2):203–212. doi:10.1086/595686
- [14] Khan DA, Banerji A, Blumenthal KG, et al. Drug allergy: a 2022 practice parameter update. J Allergy Clin Immunol. 2022;150(6):1333–1393. doi:10.1016/j.jaci.2022.08.028
- [15] Fachinformation bzw. EPAR Daptomycin (Zulassung, Niereninsuffizienz, CK-Kontrolle, Pneumonie).
- [16] Hebeisen UP, Atkinson A, Marschall J, Buetti N. Catheter-related bloodstream infections with coagulase-negative staphylococci: are antibiotics necessary if the catheter is removed? Antimicrob Resist Infect Control. 2019;8:21. doi:10.1186/s13756-019-0474-x
- [17] Raad I, Kassar R, Ghannam D, et al. Management of the catheter in documented catheter-related coagulase-negative staphylococcal bacteremia: remove or retain? Clin Infect Dis. 2009;49(8):1187–1194. doi:10.1086/605694
- [18] Non LR, Santos CA. The occurrence of infective endocarditis with Staphylococcus lugdunensis bacteremia: a retrospective cohort study and systematic review. J Infect. 2017;74(2):179–186. doi:10.1016/j.jinf.2016.10.003
- [19] Shi C, Jin W, Xie Y, et al. Efficacy and safety of daptomycin versus linezolid treatment in patients with vancomycin-resistant enterococcal bacteraemia: an updated systematic review and meta-analysis. J Glob Antimicrob Resist. 2020;21:235–245. doi:10.1016/j.jgar.2019.10.008
- [20] Berge A, Krantz A, Östlund H, Nauclér P, Rasmussen M. The DENOVA score efficiently identifies patients with monomicrobial Enterococcus faecalis bacteremia where echocardiography is not necessary. Infection. 2019;47(1):45–50. doi:10.1007/s15010-018-1208-3
- [21] BALANCE Investigators for the Canadian Critical Care Trials Group; Daneman N, Rishu A, Pinto R, et al. Antibiotic Treatment for 7 versus 14 Days in Patients with Bloodstream Infections. N Engl J Med. 2025;392(11):1065–1078. doi:10.1056/NEJMoa2404991
- [22] Yahav D, Franceschini E, Koppel F, et al. Seven versus 14 days of antibiotic therapy for uncomplicated gram-negative bacteremia: a noninferiority randomized controlled trial. Clin Infect Dis. 2019;69(7):1091–1098. doi:10.1093/cid/ciy1054
- [23] Pappas PG, Kauffman CA, Andes DR, et al. Clinical Practice Guideline for the Management of Candidiasis: 2016 Update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2016;62(4):e1–e50. doi:10.1093/cid/civ933
- [24] Andes DR, Safdar N, Baddley JW, et al. Impact of treatment strategy on outcomes in patients with candidemia and other forms of invasive candidiasis: a patient-level quantitative review of randomized trials. Clin Infect Dis. 2012;54(8):1110–1122. doi:10.1093/cid/cis021
- [25] Cornely OA, Sprute R, Bassetti M, et al. Global guideline for the diagnosis and management of candidiasis: an initiative of the ECMM in cooperation with ISHAM and ASM. Lancet Infect Dis. 2025;25(5):e280–e293. doi:10.1016/S1473-3099(24)00749-7
- [26] Kassar R, Hachem R, Jiang Y, et al. Management of Bacillus bacteremia: the need for catheter removal. Medicine (Baltimore). 2009;88(5):279–283. doi:10.1097/MD.0b013e3181b7c64a
- [27] Tamma PD, Conley AT, Cosgrove SE, et al. Association of 30-day mortality with oral step-down vs continued intravenous therapy in patients hospitalized with Enterobacteriaceae bacteremia. JAMA Intern Med. 2019;179(3):316–323. doi:10.1001/jamainternmed.2018.6226
- [28] Kommission für Krankenhaushygiene und Infektionsprävention (KRINKO). Prävention von Infektionen, die von Gefäßkathetern ausgehen. Teil 1 – Nichtgetunnelte zentralvenös eingeführte Gefäßkatheter. Bundesgesundheitsblatt. 2017;60(2):171–206. doi:10.1007/s00103-016-2487-4
- [29] Parienti JJ, Mongardon N, Mégarbane B, et al. Intravascular complications of central venous catheterization by insertion site. N Engl J Med. 2015;373(13):1220–1229. doi:10.1056/NEJMoa1500964
- [30] Maki DG, Kluger DM, Crnich CJ. The risk of bloodstream infection in adults with different intravascular devices: a systematic review of 200 published prospective studies. Mayo Clin Proc. 2006;81(9):1159–1171. doi:10.4065/81.9.1159
- [31] ECDC. Antimicrobial resistance in the EU/EEA (EARS-Net) – Annual Epidemiological Report for 2024, mit Country Summaries. Stockholm: ECDC; 2025. ecdc.europa.eu
- [32] Scholz CFP, Kilian M. The natural history of cutaneous propionibacteria, and reclassification of selected species within the genus Propionibacterium to the proposed novel genera Acidipropionibacterium gen. nov., Cutibacterium gen. nov. and Pseudopropionibacterium gen. nov. Int J Syst Evol Microbiol. 2016;66(11):4422–4432. doi:10.1099/ijsem.0.001367
- [33] Safdar N, Maki DG. The pathogenesis of catheter-related bloodstream infection with noncuffed short-term central venous catheters. Intensive Care Med. 2004;30(1):62–67. doi:10.1007/s00134-003-2045-z
- [34] Raad I, Costerton W, Sabharwal U, et al. Ultrastructural analysis of indwelling vascular catheters: a quantitative relationship between luminal colonization and duration of placement. J Infect Dis. 1993;168(2):400–407. doi:10.1093/infdis/168.2.400
- [35] Otto M. Staphylococcal biofilms. Microbiol Spectr. 2018;6(4). doi:10.1128/microbiolspec.GPP3-0023-2018
- [36] von Eiff C, Peters G, Heilmann C. Pathogenesis of infections due to coagulase-negative staphylococci. Lancet Infect Dis. 2002;2(11):677–685. doi:10.1016/S1473-3099(02)00438-3
- [37] Le KY, Otto M. Quorum-sensing regulation in staphylococci – an overview. Front Microbiol. 2015;6:1174. doi:10.3389/fmicb.2015.01174
Frage zu diesem oder einem anderen Thema? In allen Kapiteln suchen oder eine Frage stellen →